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目的：构建TGF-β1诱导星形胶质细胞(Astrocyte, AS)体外模拟神经损伤模型及SD大鼠T10脊髓钳夹损伤模型。通过BMSCs体外共培养、体内移植两种方式,探索BMSCs对脊髓损伤后胶质瘢痕形成的影响。方法：(1)全骨髓差速贴壁生长分离法将SD大鼠双后肢股骨、胫骨骨髓内的BMSCs进行分离培养。显微镜下观察细胞生长性状；流式细胞仪检测其细胞表面标志物CD2、CD3、CD45和CD90的表达；同时通过诱导成骨、成脂肪、成神经分化来鉴定BMSCs。细胞差速贴壁法将出生1-3天SD大鼠脑组织中的AS进行分离培养。显微镜下观察细胞各个阶段生长性状；应用GFAP-FITC细胞免疫荧光法对其进行鉴定。(2)构建TGF-β1诱导AS体外模拟神经损伤模型,通过观察细胞形态的变化及诱导后AS的胶质化水平,对AS损伤模型进行评估。构建SD大鼠T10脊髓钳夹损伤模型,造模后通过运动功能评价及组织病理学检测,对脊髓损伤模型进行评估。(3)体外将TGF-β1诱导的AS与BMSCs共培养12h,Western Blot检测各实验组CSPGs表达水平。造模后1周对随机分组的SD大鼠局部移植BMSCs,在随后的1-4周内进行运动功能评价及Western Blot检测CSPGs的表达水平。结果：(1)通过全骨髓差速贴壁分离培养的BMSCs增殖速度快,扩增能力强,传代培养3代后细胞可获较高纯度。通过差速贴壁法培养的AS增殖速度快,经震荡及传代培养后细胞纯度高,经GFAP-FITC细胞免疫荧光检测纯度达97.4%满足实验的要求。(2)体外AS神经损伤模型建立成功后,AS形态发生改变,胶质化水平增高。造模后,大鼠出现明显截瘫(BBB<4分),病理检测脊髓正常结构破坏等。(3)体外共培养12h后Western-Blot检测各组细胞CSPGs表达。共培养组CSPGs表达较非共培养组明显降低(P<0.05)。体内移植后1-4周,治疗组与手术对照组大鼠下肢神经功能均有一定恢复,但是B组较A组大鼠恢复好,两组大鼠BBB评分B组较A组显著提高(P<0.05)；Western Blot检测B组大鼠脊髓内CSPGs表达较A组明显降低(P<0.05)。结论：(1)通过全骨髓差速贴壁分离培养法能够获取较高纯度的BMSCs;通过细胞差速贴壁分离培养法可获得较高纯度AS。(2)成功构建TGF-β1诱导AS体外神经损伤模型及SD大鼠T10脊髓钳夹损伤模型。(3)BMSCs经体外共培养及体内局部移植两种方式均可减少胶质瘢痕的形成。