【摘 要】
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目的 探讨辅助激活因子p300诱导的乙酰化修饰介入脂多糖（LPS）诱导的炎症介质合成过程及其作用机制。方法Agilent Sureprint G3 Mouse Gene Expression V2微阵列芯片以及蛋白免疫印迹（WB）技术联合于小鼠巨噬细胞（RAW246.7）中筛选表达水平与LPS刺激强度相关的分子；凝胶电泳迁移实验（EMSA）以及染色质免疫共沉淀（chip-qpcr）方法验证相关分子
【基金项目】
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国家自然科学基金（82070081）； ','','');
">湖南省临床医疗技术示范基地立项项目（2020SK4020）；
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目的 探讨辅助激活因子p300诱导的乙酰化修饰介入脂多糖（LPS）诱导的炎症介质合成过程及其作用机制。方法Agilent Sureprint G3 Mouse Gene Expression V2微阵列芯片以及蛋白免疫印迹（WB）技术联合于小鼠巨噬细胞（RAW246.7）中筛选表达水平与LPS刺激强度相关的分子；凝胶电泳迁移实验（EMSA）以及染色质免疫共沉淀（chip-qpcr）方法验证相关分子与炎症基因IL-6以及TNF-α启动子部位的结合现象；相关分子过表达或干扰质粒转染RAW246.7后，WB法检测转染质粒的作用效果，ELISA方法检测IL-6以及TNF-α合成水平，染色质免疫沉淀-测序技术（chip-seq）分析炎症基因启动子部位相关分子的结合以及H3K27的乙酰化修饰水平。结果 微阵列芯片以及WB技术共同证实p300的表达与LPS刺激强度存在较好关联。免疫共沉淀证实了p300与c-myb存在结合现象。EMSA证实c-myb可与炎症基因启动子序列结合，而p300不能直接结合；chipqPCR表明当c-myb被干扰时，p300不能与炎症基因启动子序列结合。WB检测显示过表达或干扰质粒均能够干预相关分子的表达，且p65、p300以及c-myb 3者在表达上无相互影响。ELISA联合chip-seq显示与对照组比较，p300过表达以及LPS刺激均可导致炎症基因启动子部位结合的p300和H3K27乙酰化修饰水平增加，从而促进p65与启动子的结合和炎症基因转录（P<0.05）；而c-myb表达被干扰时，p300过表达以及LPS刺激诱导的p300与p65在启动子的结合、H3K27乙酰化修饰和炎症介质合成均被遏制（P<0.05）。在p65干扰相关组别中，p65与启动子的结合以及炎症基因转录均被抑制（P<0.05），但未对p300的结合以及H3K27乙酰化水平造成影响。结论 LPS刺激可诱导p300合成，后者在c-myb介导下结合于炎症基因启动子区域，并通过乙酰化H3K27易化启动子与p65结合，从而促进炎症基因表达。
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