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目的探讨人羊膜间充质干细胞（human amniotic mesenchymal stem cells,h AMSCs）是否具有MSCs特性,以及经TGF-β1和VEGF联合诱导后是否具有向韧带成纤维细胞分化的能力。方法取自愿捐赠的足月产妇胎盘,采用胰蛋白酶胶原酶联合消化法分离培养h AMSCs,流式细胞术检测h AMSCs表型分子,免疫荧光染色检测h AMSCs其角蛋白-19（cytokeratin-19,CK-19）和波形蛋白表达情况。取第3代h AMSCs,分别使用含TGF-β1和VEGF的L-DMEM/F12成韧带或纤维细胞诱导培养基（实验组）和普通L-DMEM/F12培养基（对照组）培养,细胞增殖-毒性检测试剂盒（cell counting kit-8,CCK-8）检测两组细胞增殖能力;培养5、10、15 d分别采用免疫荧光染色及实时荧光定量PCR检测韧带及血管生成相关特异性蛋白和基因表达。结果倒置相差显微镜观察示h AMSCs呈单层贴壁生长;流式细胞术结果示h AMSCs表达MSCs表型分子;免疫荧光染色示h AMSCs高表达波形蛋白、低表达CK-19;h AMSCs具有向成骨、成软骨及成脂细胞分化的能力。CCK-8法检测示,7 d时两组细胞均达增殖高峰,实验组细胞增殖能力于7 d后显著高于对照组（P<0.05）。免疫荧光染色示,培养5、10、15 d时实验组Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原、纤维连接蛋白（Fibronectin）、细胞连接素（Tenascin-C）表达染色均较对照组增强。实时荧光定量PCR结果示,随时间延长实验组Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原、Fibronectin、α-肌动蛋白（α-smooth muscle actin,α-SMA）、VEGF m RNA相对表达量均逐渐上调（P<0.05）。除培养5 d两组Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原、VEGF m RNA相对表达量比较差异无统计学意义（P>0.05）外,其余各时间点实验组Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原、Fibronectin、α-SMA和VEGF m RNA相对表达量均显著高于对照组（P<0.05）。结论 h AMSCs具有MSCs特征,且体外增殖能力良好,可作为组织工程种子细胞来源;体外诱导后韧带成纤维细胞及血管生成相关特异性基因表达上调,韧带成纤维细胞特异性蛋白分泌增加,TGF-β1联合VEGF可作为构建组织工程韧带的生长因子选择。