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目的：通过建立幽门螺杆菌小鼠13C-UBT、14C-UBT模型，探究构建小鼠呼气模型的条件和方法，分析影响幽门螺杆菌小鼠呼气模型仪器、条件及生物因素，为研究幽门螺杆菌动物模型提供一种无创性实时检测方法，客观评价HP疫苗在小鼠模型中的免疫保护效果以及对H.pylori致病性的深入研究提供一种简单、快速、便宜而且可靠的诊断手段。方法：利用6~8周龄BABL/c小鼠构建小鼠呼气模型的条件方法：通过对小鼠饲喂不同13C-Urea、14C-Urea药物剂量，间隔不同时间检测，建立13C-UBT、14C-UBT实验模型；饲喂不同H.pylori菌量，通过相同时间检测，探究13C-UBT在相同检测时间中饲喂不同菌量的小鼠的呼气关系；小鼠饲喂不同H.pylori菌量，不同时间检测，探究13C-UBT、14C-UBT中不同菌量和时间的相互关系。探究影响幽门螺杆菌小鼠呼气试验模型的生物因素，确定影响呼气试验的小鼠体内菌种的组织定位，分离培养并筛选影响呼气试验的小鼠体内尿素酶阳性细菌；对分离出的尿素酶阳性细菌进行飞行质谱鉴定及16srDNA-PCR扩增测序，两种方法确定菌株菌种；对分离出的尿素酶阳性细菌进行尿素酶活性进行定性定量的检测。结果：小鼠13C-UBT、14C-UBT同一呼气时间检测数值与小鼠饲喂药量成正相关；同一饲喂药量中随着饲喂药物后检测时间延长，衡量呼气的检测数值增大，一定时间后达到最大值，此后随时间的延长，检测数值减小。成功建立幽门螺杆菌小鼠13C-UBT、14C-UBT模型：13C-UBT模型中选用0.1mg-13C-Urea药量，给予小鼠300ml活动空间，饲喂药物后呼气10min，收集250ml气体进行检测；14C-UBT呼气中选用0.556KBq-14C-Urea药量，给予200ml活动空间，饲喂药物后呼气10min，收集150ml气体进行检测；饲喂小鼠不同菌量H.pylori进行相同呼气时间的检测，13C-Urea、14C-Urea呼气试验中呼气数值均随着H.pylori菌量的升高而增大；饲喂小鼠不同H.pylori菌量，13C-UBT、14C-UBT各曲线走势相同，低浓度的菌量受到小鼠体内因素的影响大，1×109CFU的H.pylori菌量有很好的增幅曲线和趋势。成功对小鼠呼气试验中参与细菌进行定位，参与影响呼气试验的细菌位于胃及小肠组织，筛选出155株尿素酶阳性细菌；利用飞行质谱及16srDNA-PCR扩增测序两种方法确定菌株菌种，大部分为大肠杆菌，剩余以侵肺巴斯德菌居多，也检测出缓慢葡萄球菌、流感嗜血杆菌、链球菌等细菌；通过对分离出的细菌进行尿素酶活性定性定量测定，分离出的细菌尿素酶活性远远小于H.pylori。结论：（1）成功建立H.pylori小鼠13C-UBT、14C-UBT模型，能够对小鼠进行无创性实时检测；（2）小鼠13C-UBT、14C-UBT模型中13C-Urea、14C-Urea饲喂药量、 H.pylori菌量、呼气检测时间均与检测数值相关。其中H.pylori低浓度菌量受小鼠体内因素的影响大，H.pylori菌量为1×109CFU受到的影响小；（3）虽分离出的影响呼气试验的细菌尿素酶活性小于H.pylori，但在进行小鼠呼气试验中仍要注意并尽量减少其对实验的影响。