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目的:1、建立果糖饮食诱发大鼠发生NAFLD等代谢疾病并伴代谢性内毒素血症的动物模型。2、探讨通过腹腔注射LPS模拟代谢性内毒素血症,观察其在代谢性疾病中发挥的机制作用。方法:正常对照组(Normal Control,NC组)给予大鼠正常饮食;高果糖组(High Fructose Diet,HFD组)大鼠给予8%的果糖水喂养;内毒素组(LPS组)大鼠给予正常饮食,皮下微量注入LPS(300μg?kg-1?d-1皮下注射)。每周测量大鼠体重,8周末禁食12小时后,糖耐量实验结束时,经乙醚麻醉后取腹主动脉血,3500r/min离心10min后取上层血浆,然后快速分装置于-40℃备用。迅速分离肝脏组织,部分置于4%多聚甲醛溶液固定,石蜡包埋,固定,切片,行苏木素伊红染色(HE染色);部分OCT包埋置于-80℃保存,随后制作冰冻切片(油红O染色);剩余样本置于液氮速冻后转-80℃冷冻保存,供western blot实验使用。1、血脂系列及肝酶和血浆相关指标检测酶法检测各组血浆甘油三酯(TG)、总胆固醇(TC)、游离脂肪酸(FFA)、高密度脂蛋白(HDL-C)水平变化;酶法定量检测肝脏组织TG。酶法检测空腹血糖(FPG,Fasting plasm glucose);ELISA法检测血浆空腹胰岛素FINS(Fasting insulin)水平,并计算胰岛素抵抗指数,公式为:HOMA-IR=空腹血糖(mmol/L)*空腹胰岛素(EU/ml)/22.5。2、血浆内毒素与促炎因子检测鲎试剂显色法检测血浆内毒素(lps)水平变化;elisa法检测血浆中肿瘤坏死因子α(tnf-α)、白介素6(il-6)水平变化,并分析lps与homa-ir的相关性分析。3、肝脏组织病理学检测于4%多聚甲醛溶液中取出肝脏组织,常规石蜡包埋切片,厚度5μm,行h&e染色,光镜下观察肝组织病理学变化;与-80℃取出oct包埋组织,置于-25℃冰冻切片机复温15min,横切组织8μm,行油红o染色,光镜下观察比较各组肝组织中的红色脂质。4、westernblot分析采用westernblot检测肝组织胰岛素受体底物蛋白1(irs1)及其磷酸化蛋白(p-irs1try632);同时检测lps受体tolllikereceptor4(tlr4)蛋白水平。结果:1、体重变化及糖耐量结果实验期间,各组大鼠总体状态良好,有4只脱组。hfd组与lps组大鼠体重在2-8周变化显著高于nc组(p<0.01,p<0.05)。与nc组相比,hfd组与lps组各时间点血糖均显著升高(p<0.01,p<0.05)。说明hfd组与lps组大鼠发生糖耐量异常。2、血脂、肝酶检测结果hfd组与lps组tg(血浆与肝组织)、tc、alt、ffa水平均显著高于nc组(p<0.01,p<0.05),hdl-c水平则显著降低(p<0.05),hfd组与lps组上述指标变化无统计学差异。3、血浆内毒素与胰岛素及促炎因子检测hfd组与lps组血浆lps、fins、fpg、及homa-ir显著高于nc组(p<0.05,p<0.01)。hfd组与lps组tnf-α、il-6水平显著高于nc组(p<0.05),hfd组与lps组差异无统计学差异。hfd组与lps组lps水平与homa-ir呈正相关(rs=0.85,p<0.01)。4、肝组织病理学结果NC组肝脏外表暗红,无油腻感,H&E染色可见肝细胞以中央静脉为中心,向周围呈放射状排列。HFD组与LPS组肝脏外观发白,切面有明显油腻感;组织汇管区出现脂滴空泡,伴有气球样变。同时LPS组肝小叶和汇管区可见炎细胞浸润,部分伴有点状坏死。油红O染色可见HFD组和LPS组出现大量红色脂质。5、western blot结果HFD组与LPS组肝组织TLR4表达显著升高(P<0.01),IRS1、p-IRS1Tyr632/IRS1比值则显著降低(P<0.05),HFD组与LPS组相比无统计学差异。结论:1、高果糖饮食可诱发大鼠发生多种代谢疾病,如NAFLD等,表现为体重增加(腹部肥胖型)、血脂及肝酶异常、糖耐量受损、IR、肝组织脂肪变性、释放促炎因子、胰岛素信号通路受损(胰岛素受体底物表达减少),且存在代谢性内毒素血症。其发病特征与人类发病十分相似。2、高果糖饮食诱发代谢疾病中LPS通过与TLR4结合,触发炎症因子表达增加,引发肝脏及外周发生胰岛素抵抗,促发NAFLD等代谢疾病的发生发展。