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目的探讨不同表型的表皮葡萄球菌(Staphylococcus epidermidis,SE)之间的相互作用机制以及luxS基因在SE形成生物膜过程中所起的作用。方法（1）分别应TSB培养液、上清液1以及上清液2培养产生物膜的表皮葡萄球菌标准菌株ATCC35984和不产生物膜的ATCC12228菌株，并采用刚果红平板法定性检测细菌间多糖粘附素(polysaccharide intercellular adhesin，PIA)。（2）分别用上清液2与上清液3培养PIA阳性菌株ATCC35984以及上清液1培养PIA阴性菌株SE ATCC12228，分别将培养后的细菌接种于96孔平板中，观察不同方法培养细菌的粘附情况。（3）分别观察SE ATCC35984在培养液1（上清液2采用TSB倍倍稀释法）以及SE ATCC12228在培养液2（上清液1采用TSB倍倍稀释法）在96孔板粘附情况。（4）收集TSB以及上清液1培养后SEATCC12228菌株和通过TSB以及上清液2培养后SEATCC35984，提取总RNA，应用RT-PCR实验方法检测不同细菌中LuxS表达水平。结果（1）葡萄球菌在刚果红培养基生长情况在对照组A1组中SE ATCC35984菌株菌落在刚果红平板上呈黑色、光亮、干燥菌落，而在实验组A2中，该菌株菌落为底黑酒红色。在对照组B1菌株菌落在刚果红平板上呈红色光滑菌落，而在实验组菌菌株在刚果红平板上呈底黑酒红色。（2）对照组A1组菌株形成厚厚致密的生物膜，而实验组A2组菌株形成的生物膜较薄，比较稀疏。两组菌株OD值之间比较，差异具有统计学意义（P＜0.05）。对照组B1组菌株不能形成生物膜，而经上清液1培养的实验组B2菌株能成的明显的生物膜，两组菌株OD值之间比较，差异具有统计学意义（P＜0.05）。另其它空白对照组C组中TSB培养液、上清液1以及上清液2均不能形成生物膜。（3）在培养液1稀释至256倍后，SE ATCC35984产生的生物膜与在TSB培养产生的生物膜的OD值基本一致，在培养液2稀释至16倍后，SE ATCC12228基本不产生物膜。（4）在ATCC35984上清液中，ATCC12228菌株形成生物膜的能力增强， LuxS基因表达降低。在ATCC12228菌株上清液中，ATCC35984产生生物膜能力下降，LuxS基因表达增强，两者比较差异均有统计学意义（P＜0.05）。结论1.不同表型表皮葡萄球菌之间可能存在着相互影响的现象。2. LuxS基因在表皮葡萄球菌形成生物膜的过程中可能起到一定的调节作用。3. AI-2信号在一定的浓度范围内才能起到调节作用。4.绿脓杆菌上清液中可能存在能够分解AI-2信号分子的物质。