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用紫外线、亚硝基胍、和腐霉利对采自田间的对腐霉利（procymidone）敏感的5个灰葡萄孢（Botrytis cinerea）菌株（HY2-1、HY2-2、HY2-3、DF2-2、XY6-1）分生孢子进行抗药性诱导，共获得抗腐霉利菌株67个，其中高抗菌株(EC50＞100μg／ml)54个，占抗性菌株总数的80.60％；中抗菌株(10μg／ml＜EC50≤100μg／ml)2个，占2.98％；低抗菌株(1μg／ml＜EC50≤10μg／ml)11个，占16.42％。3种诱变方法以紫外线诱变频率最高，平均为0.413×10-6；其次为亚硝基胍，平均诱变频率为0.252×10-6；腐霉利诱变频率为0.190×10-6。诱导的5个抗性菌株中，以XY6-1菌株较易产生变异，变异率达0.591×10-6，且突变菌株都为高抗菌株；HY2-3菌株较难变异，变异率仅为0.147×10-6。 筛选出感腐霉利抗乙霉威的菌株XY6-1（DicS NpcR）和抗腐霉利感乙霉威的菌株XY6-1 140（DicR NpcS），将这两个菌株在PSA平板上进行对峙生长获融合菌丝，挑取融合部位菌丝在PSA平板上培养至产孢，经单孢分离和测定后得到18个DicR NpcR表型的单孢菌株。测定18个单孢后代的抗性水平，其中16个菌株对腐霉利的抗性水平与抗性亲本（DicRNpcS）一致，2个菌株对腐霉利的抗性水平低于抗性亲本。 将抗性菌株在不含药剂的培养基上转代培养，直至20代，测定后代的抗药水平。结果表明，有79.1％的菌株抗性水平稳定，与其亲本一致，20.9％的菌株抗性不稳定，其中部分菌株丧失了抗药性。另外，高抗菌株中有87.0％菌株的抗药性能稳定遗传，而中低抗菌株有53.8％抗药性呈不同程度降低。 从抗性稳定的高抗菌株中，挑选出6个菌株进行单孢分离，共得到455个单孢菌株。测定单孢株的抗性水平表明，有86.8％单孢株抗性水平与亲本比较没有下降，也没有出现抗药性丧失的单孢菌株。来自DF2-2 050、HY2-2 070、XY6-1 140的单孢菌株，其抗性水平都能稳定遗传，而HY2-1 200、HY2-3 050、D1-3的单孢菌株，24.3％抗性水平呈不同程度的下降。 通过菌丝生长速率、产孢能力、致病性等性状的测定，比较诱导的高抗菌株HY2-1 200、HY2-2 070、DF2-2 050、XY6-1 140与其原始菌株及野生抗性菌株D1-3与敏感菌株的生物学特性差异。发现诱导的抗性菌株的菌丝生长速率普遍显扬州大学硕士学位论文著性慢于敏感菌株;而致病性、产抱能力差异较大。Dl一3的菌丝生长率和致病性界于敏感菌株之间:产抱量显著低于敏感菌株。 用相同浓度的抗感菌株分生抱子液混合接种番茄叶片，发病后分离病斑及病斑表面的分生抱子。测定病斑和分生抱子形成的菌株对腐霉利的抗感性。试验表明，有2个抗性菌株的适合度高于其原始菌株，2个菌株低于其原始菌株。野生抗性菌株Dl一3的适合度低于敏感菌株。