目的：本实验目的为（1）确定舒普深在兔玻璃体腔注射的安全有效剂量，以指导人玻璃体腔用药。（2）了解绿脓杆菌性眼内炎的临床表现、B超及其病理发展过程。（3）评价舒普深治疗绿脓杆菌眼内炎的疗效。方法：1 视网膜毒性试验组：成年健康青紫兰兔15只，随机分为5组，每组6只眼。每组注射舒普深剂量分别为： 0mg/0.1ml、5mg/0.1ml、10mg/0.1ml、20mg/0.1ml、40mg/0.1ml。注药后1、2、4、8、12、24小时各观察一次，以后每天观察一次。比较注药前及注药后第1、3、7、14天ERG检查结果。2周后行大体标本观察及光镜和透射电镜观察。对ERG的a、b波振幅变化用方差分析进行检验。2 自然病程组观察：青紫兰兔6只，玻璃体注入0.1ml（含1000个左右）绿脓杆菌。注菌后12小时，16小时，20小时，24小时，30小时，44小时，取材做光镜观察。３ 药物疗效组３.1 疗效对比组：青紫蓝兔18只，注菌后6小时，随机分为3组，分别注入舒普深10mg/0.1ml,头孢他啶2.25mg/0.1ml，生理盐水0.1ml。24小时后取材做光镜观察。3.2 一周观察组：青紫蓝兔12只，随机分为2组。第一组注菌后6小时注入舒普深10mg/0.1ml，第二组注菌后20小时注<WP=4>入舒普深10mg/0.1ml。1天、2天、3天、1周行裂隙灯、间接检眼镜、B超观察。一周后作ERG检查视网膜功能。3.3 每组动物处死前随机抽取2只眼睛玻璃体液作细菌培养。结果:1 视网膜毒性组1.1 常规眼科检查：各组均未见明显的异常改变。1.2 闪光ERG检查结果：（1）注药后1天、3天各剂量组振幅降低与注药前均有显著性差异(P<0.05)。（2）注药后1周、2周，5毫克组、10毫克组，对照组振幅与注药前无显著性差异(P>0.05)。20毫克组、40毫克组的振幅与注药前有显著性差异(P<0.05)。1.3 光镜：5毫克、10毫克剂量组与生理盐水对照组相比无明显变化。20毫克组内外节轻度紊乱。40毫克组视网膜内外节变短甚至消失，各层次重度紊乱。1.4 电镜：电镜与光镜结果一致，生理盐水组、5毫克组、10毫克组在电镜下，均未见明显异常改变。20毫克组、40毫克组出现病理性改变。2 自然病程组：2.1 常规眼科检查：注菌后6-8小时开始出现炎症反应， 24-30小时达高峰。2.2 B超观察：6小时观察在进针的方向有局限性混浊。18小时后浑浊加重，出现玻璃体后脱离，网膜水肿增厚。2.3 光镜观察：12小时虹膜表面出现渗出，16小时出现中性粒细胞浸润，随着时间延长，炎症加重。30小时，玻璃体脓肿形成。 44小时，睫状体、视网膜、脉络膜、视神经<WP=5>全层结构破坏。3 药物疗效组3.1 疗效对比组3.1.1 常规眼科检查：第一组炎症反应轻,第二组炎症反应较重。第三组炎症反应重。第一组与第二组无显著性差异（P>0.05），第三组与第一、二组均有显著性差异（P<0.05）。3.1.2 B超检查：第一组5例混浊未见扩散，第二组3例混浊未见扩散，第三组1例混浊未见扩散。第一组与第二组无显著性差异（P>0.05），第三组与第一、二组均有显著性差异（P<0.05）。3.1.3 大体标本：第一组、第二组，玻璃体腔未见异常。第三组，玻璃体为脓性。3.1.4 光镜观察：第一、第二组，炎症反应轻微,第三组，炎症剧烈，玻璃体脓肿形成，视网膜全层结构破坏。第一组与第二组无显著性差异（P>0.05），第三组与第一、二组均有显著性差异（P<0.05）。3.1.5 细菌培养结果:第一、二组培养结果均为阴性，第三组培养结果均为阳性。3.2 一周观察组：3.2.1 常规眼科检查：第一组炎症消退,第二组炎症反应剧烈,前房积脓，眼底窥不进。第一组与第二组有显著性差异（P<0.05）。3.2.2 B超检查：第一组混浊未见扩散，第二组混浊扩散。第一组与第二组有显著性差异（P<0.05）。3.2.3 大体标本：第一组玻璃体腔未见异常。第二组玻璃<WP=6>体内充满豆渣样脓性物质。3.2.4 光镜观察：第一组炎症反应轻微,第二组炎症剧烈，玻璃体脓肿形成，全层结构破坏，尚未侵及巩膜。第一组与第二组有显著性差异（P<0.05）。3.2.5 ERG观察：第一组两只眼各波振幅恢复术前水平，第二组两只眼均为熄灭波。3.1.6 细菌培养结果: 第一组培养结果均为阴性，第二组培养结果为阳性。结论：1. 舒普深兔玻璃体腔注射的安全有效剂量为10mg/0.1ml，推测人玻璃体腔注入30mg应为安全剂量。2. 10mg/0.1ml舒普深兔玻璃体腔注射治疗早期绿脓杆菌眼内炎有效，可以初步控制晚期眼内炎的炎症。