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为寻找高效分解纤维素的真菌资源，从新疆不同地区采集到土样45份。以纤维素为唯一碳源对土壤样品进行初筛，得到40株能够分解利用纤维素的真菌菌株。将上述菌株在产酶培养基中培养，测定培养液上清中纤维素酶的活性，筛选出9个纤维素酶活性高的菌株。其中编号为X20-2的菌株分泌的纤维素酶和β-葡萄糖苷酶活力最高。
通过形态观察和分子系统学方法，对菌株X20-2进行鉴定。以菌株基因组DNA为模板，根据啤酒酵母rDNA保守区域设计引物，扩增出该菌株18SrDNA全长1785bp和5.8SrDNA137bp，通过与Genbank中的已知序列进行同源性比较，发现与葡萄穗霉属(Stachybotrys)相关菌株上述序列同源性分别在99％和100％，而两个ITS区(共468bp)与已知菌株的同源性只有92％；采用黑光灯照射诱导菌株产孢，结合菌体形态特征，观察分生孢子与孢子梗的形态，确定菌株X20-2为葡萄穗霉。毒理实验证明，该菌株培养液中不含毒素，可以进行安全的产酶培养。
通过单次单因子实验对菌株产生β-葡萄糖苷酶的条件进行优化，确定麦麸为产酶培养基的最适碳源。经过优化培养，β-葡萄糖苷酶活力从最初的4.9U/ml提高到9.37U/ml。测定粗酶对葡萄糖的耐受性，发现当葡萄糖浓度在10g/L时，该β-葡萄糖苷酶仍可保持原总酶活的28％。
粗酶液经硫酸铵沉淀和DEAE-52、HiTrap_DEAE_FF柱层析及MonoQ强阴离子层析柱纯化，获得X20-2菌株的β-葡萄糖苷酶，酶蛋白在SDS-PAGE中显示一条带，其分子量约为100kDa。其比活力达到29903.45U/mg，比粗酶液提高了143.5倍。酶学性质分析表明，该酶反应的最适温度为60℃，最适pH为5.6，并在60℃以内及碱性条件下稳定。Ag+、Cu2+、Zn2+和Fe3+对该酶有不同程度的抑制作用。